使用BLAST进行序列比对-具体代码和原理
一、BLAST:短序列比对工具指南
BLAST(Basic Local Alignment Search Tool)是一款常用的短序列比对工具,支持直接输入FASTQ格式的序列文件进行比对分析。以下是 BLAST 的安装、数据库构建和序列比对的详细步骤:
1. 下载和解压 BLAST
方法①
wget -c ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/blast/executables/blast+/LATEST/ncbi-blast-2.10.0+-x64-linux.tar.gz
tar -xvzf ncbi-blast-2.10.0+-x64-linux.tar.gz
方法②
使用conda安装即可,包括:blastn, blastp, blastx, tblastn, tblastx等。
conda install -c bioconda blast
# blast安装perl模块的方法
conda install perl-digest-md5
2. 构建数据库
在比对前,需要先用参考序列文件创建数据库:
makeblastdb -in genome.fasta -dbtype nucl -parse_seqids -out ./index
注释:
-in:指定输入的参考序列文件(如genome.fasta)。
-dbtype:数据库类型,nucl表示核苷酸,prot表示蛋白质。
-out:设置输出的数据库名称(如./index)。
3. 序列比对工具(之前也有文章介绍)
BLAST 提供了 5 种工具,根据序列类型选择适用的工具:
blastn:核苷酸序列比对至核苷酸数据库。
blastp:氨基酸序列比对至氨基酸数据库。
blastx:核苷酸序列翻译为氨基酸后比对至氨基酸数据库。
tblastn:氨基酸序列比对至核苷酸数据库,并将核苷酸序列翻译为氨基酸。
tblastx:核苷酸序列翻译为氨基酸后,与数据库中的翻译序列进行比对。
4.以下以 blastn 为例,核苷酸序列比对至核苷酸数据库
运行比对命令:blastn -query input.fa -db ./index -evalue 1e-6 -outfmt 6 -num_threads 6 -out out_file
参数说明:
-query:指定输入序列文件(如input.fa)。
-db:指定使用的数据库(如./index)。
-evalue:设定 E 值的阈值,E 值小于1e-5表示序列具有较高的同源性。
-outfmt:设置输出格式,常用6(表格形式)。
-num_threads:指定线程数,提高运行速度。
-out:设置输出结果文件(如out_file)。
5.运行结束后,可查看比对结果。
运行结束后,可查看比对结果。l如果需要显示序列每个碱基的比对情况,可省略-outfmt参数:
blastn -query input.fa -db ./index -evalue 1e-6 -num_threads 6 -out out_file
如下生成序列对齐图,方便分析比对的具体位置和程度。
6.绘图工具
方法①:
如果你想使用工具来获得图片,推荐打开ENDscript/ESPript网站(http://espript.ibcp.fr/ESPript/cgi-bin/ESPript.cgi)对序列比对结果进行作图,点击选择文件上传得到的clustalw.aln文件,再点击页面顶部的SUBMIT按钮即可,注意在该页面的底部可以选择输出的文件类型以及图片格式,主要有.png和.TIF格式的图片,两种格式的图片都可以作为文章发表。
方法②
以下提供代码
1)R代码
-- 首先:安装MiKTeX
① 官网下载
② 安装即可(按照提示完成安装。安装过程中可以选择默认设置,通常选择“Install for anyone”即可)
③ 验证安装
- 打开命令提示符(按Win + R,然后输入cmd)。
- 输入以下命令检查pdflatex是否可用:pdflatex --version
- 如果显示 pdflatex 的版本信息,则说明安装成功。
如果显示 pdflatex 的版本信息,则说明安装成功。
注意:
- 在安装过程中,MiKTeX 会自动配置环境变量。但为了确保pdflatex命令可以在命令提示符中使用,检查环境变量是否已经配置。
- 打开“控制面板” → “系统和安全” → “系统” → “高级系统设置” → “环境变量”。
- 在“系统变量”中找到Path,点击编辑,确保 MiKTeX 的安装路径(例如C:/Program Files/MiKTeX 2.9/miktex/bin/x64)已被添加到路径中。
-- 在 R 中验证
① 打开 R 或 RStudio,运行以下命令:system("pdflatex --version")
② 如果返回版本信息,表示 R 能够找到pdflatex。就可以跑代码了。
③ 绘图代码如下:
④跑完代码会有一些信息,他只是关于生成LaTeX文档时的输出和日志记录。
内容包括:
1)文件生成:报告显示在执行过程中创建了多个文件:
- OS180_aligment_result.fasta:存储了比对的序列信息。
- OS180_Alignment.tex:这是生成LaTeX文件的过程。
- OS180_Alignment.pdf:最终输出的PDF文件,包含了序列对齐的可视化结果。
2)LaTeX处理:
- 系统成功加载了多个必需的包,包括texshade.sty和图形相关包。
- 输出显示了各类字体和映射文件的加载,包括一些Type1字体和图形设置。
- 最终,生成了PDF文件,表明LaTeX编译成功。
3)警告信息:
- 有一条"Non-PDF special ignored!"的警告,通常这类信息可以忽略,表示某些非PDF的特定操作被忽略。
- 还有一个关于MiKTeX更新的提示,提醒用户检查是否有MiKTeX的更新版本。虽然这不是一个报错信息,但可能会影响未来的兼容性或功能。
4)生成的文件:
- OS180_Alignment.pdf:这是最终的输出文件,其中包含了比对结果的图形。
-- 最终结果
-- 图片意义和所用包的介绍
主要包含的是序列比对(Alignment)的结果(包含一个多序列比对的可视化图(如使用texshade包生成的图)。
1.序列比对的可视化
序列比对是指将多个基因、蛋白质或其他生物分子的序列进行对比,找出它们之间的相似性和差异。
比对图通常展示不同序列在同一位置上的相似性(比如碱基或氨基酸是否相同),并标出保守区域和变异区域。
texshade是一个 LaTeX 包,用于生成序列比对的高质量可视化图,通常在生物信息学中用于展示多序列比对的结果。
2.作用和意义
保守性分析:比对图帮助识别多个序列中的保守区域。这些保守区域可能是具有生物学功能的重要部分,如催化活性位点、DNA结合区域等。
突变和变异检测:比对可以揭示不同序列之间的突变或变异。例如,基因突变可能导致某些序列位置的变化,影响蛋白功能或生物学特性。
物种间比较:如果比对的序列来自不同物种,这类图可以帮助识别物种间的相似性和差异,进而推测它们的进化关系。
功能域分析:通过比较多个同源基因或蛋白质的序列,可以推测它们的功能域,并帮助设计实验来验证这些功能。
3.具体应用
基因功能研究:如果你在研究某个基因的功能,序列比对图可以帮助你理解该基因在不同物种或样本中的变异情况,从而推测该基因可能的功能区域。
同源基因预测:通过比对多个物种中的基因序列,可以预测哪些基因是同源基因,这些基因可能在进化过程中保持了相似的功能。
药物设计和靶点研究:对于药物研究者来说,了解基因或蛋白质序列中的保守区域可以帮助设计药物靶点,尤其是在开发针对特定变异的靶向药物时。
4.图的组成部分
行:每一行通常代表一个不同的序列。
列:每一列表示在该位置上不同序列的碱基或氨基酸。
颜色和符号:不同的颜色或符号可以表示不同的保守性、突变或变异情况。例如,保守的碱基或氨基酸可能被标记为相同颜色,而变化大的位置可能显示为不同颜色或带有特殊标记。
共识序列(Consensus Sequence)是指在多个生物序列中,经过比对和分析,能够代表一组序列中最常见(保守)的碱基或氨基酸的序列。共识序列通常用于表示一组相似序列的整体特征,尤其在研究基因、蛋白质、顺式调控元件等领域中具有重要意义。
不想写了,下次再放上Python的分析绘图代码。嘿嘿~
参考资料:
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK279690/
https://www.jianshu.com/p/de28be1a3bea
https://www.jianshu.com/p/cf2dafcf6
Configuring and customizing a SequenceServer BLAST
BLAST Command Line Applications User Manual
做出漂亮的序列比对alignment图——ENDscript/ESPript
python实现两个DNA序列(sequences)对齐并绘图_python如何画出对其序列
生物信息学领域非常广泛,难以一次说尽。我们下次继续更新,一起深入学习生物信息学的内容!
喜欢的宝子们点个赞吧~码字不易,且行且珍惜~
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